采用当家品种下寨65和青薯168.

1.2 试验方法

1.2.1 催芽 于11月中旬左右，挑拣表皮光滑、正常薯形、大小均匀、无病害和无损伤薯块，放置在有供暖的房间，室内温度24 ℃左右进行催芽。在催芽前薯块正处于休眠期，采用0.05~0.l0 mg/L的GA3来处理薯块，浸没于GA3溶液中10~20 min,以打破休眠[4].

1.2.2 种薯处理 采用MS培养基，加入不同配比的激素，准备BA、NAA、GA3、IBA和IAA,由于激素在培养基中用量非常少，且不易溶于水，所以采用特殊的配置方法，配置成500 mg/L的溶液待用。当两个品种的种薯芽长到2~3 cm时，挑选生长健壮的芽，用清水冲洗芽部表面污物，在无菌操作室采用12种不同的方法进行表面消毒，用最近制作的蒸馏水冲洗四五次，将表面消毒剂彻底清除，不同表面消毒剂处理时间见表1.

1.2.3 茎尖组织培养 在解剖镜下剥取大小为0.30~

0.50 mm茎尖生长点，置于不同浓度生长调节剂的MS培养基上进行培养，培养基编号为MS1~MS12,另设不加任何生长调节剂的MS培养基作为对照（CK），植物生长调节剂配比见表2.

1.2.4 马铃薯脱毒苗培养 在无菌条件下，将得到的无毒苗进行切段，每段带一叶，置于不同种类、浓度的1/2MS培养基中进行培养，中国农业网以不加任何生长调节剂的1/2MS培养基作为对照，编号为M1~M9,快繁培养基配比见表3.

2 结果与分析

2.1 不同表面消毒方法对茎尖成活率和污染的影响

从表4可以看出，在茎尖组织培养过程中，外植体在清水冲洗后，直接采用0.1 %升汞或5 %次氯酸钠消毒，都可以将污染控制在5 %以下，但需时稍长，不同程度地影响到成活率。另外由于升汞的渗透性强，不宜彻底清洗，且对环境污染严重，建议尽量不要使用。

2.2 不同生长调节剂培养基配比对茎尖组织生长的影响

从表5可以看出，不含生物调节剂的培养基，马铃薯茎尖组织的生长非常缓慢，导致成苗率低下。在同等条件下，KT和6-BA对马铃薯茎尖组织的生长都具有促进作用，且效果显著，就这两种物质而言，含有KT的培养基中成苗率较低。在同等条件下加入GA3,可明显促进马铃薯茎尖组织分化，加快生长，提高成苗率。

2.3 不同生长调节剂配比对马铃薯脱毒苗快繁的影响

经过观测表明，与对照培养基相比较，培养基中加入生长调节剂后，芽萌发推迟，有效促进幼根生长。生长调节剂浓度过大时，愈伤组织发达，生根受到抑制。在实验中观察到下寨65对NAA较为敏感，浓度稍大就会产生较大愈伤组织，生根较为缓慢，而青薯168反应较为迟钝，结果见表6.

3 结论

通过实验发现，在马铃薯脱毒技术实施过程中，采用酒精与其他两种表面消毒剂配合使用效果最好，能有效控制污染，降低对茎尖组织的影响。剥离的茎尖组织诱导成苗是脱毒快繁的关键技术，在实验中，KT和BA均有助于茎尖组织分化成苗。在快繁中，适当浓度的生物调节剂对马铃薯茎段生根有促进作用，但当浓度过高时只产生分生组织，不利于小苗生根，而且各品种表现有所不同。